❶ 请问，emb平板中的2%伊红Y溶液和0.65%美蓝溶液是怎么配制的另外，GBT4789.28-2003中说道的EMB临用是加入
回答前先说两点：
1、GBT4789.28-2003里的EMB是用来做大肠菌群的，但是食品大肠菌群已经有新标准，不再用2003版本的了，也不再使用EMB，只在做水的时候用。
2、最好购买成品培养基，这些成分复杂的培养基配起来太费力了，一瓶大概80元左右，250g，可以用很久了。
伊红和美蓝在水中不是很好溶解，但是比较容易溶解于有机溶剂中，可以先用少量酒精溶解，然后再用纯水定溶到刻度线，称2克定容到100ml这些我就不用细说了吧？
乳糖可以在调整完ph值后直接加入，然后再灭菌，不需要临用时候加（这个在GB/T5750的标准里已经是这样写的了），伊红和美蓝其实也可以加进去之后再灭菌的，影响不大，成品培养基里其实就是加好了的，灭菌过程对伊红和美蓝的影响其实可以忽略。不过，你一定要按国标严格操作的话，伊红美蓝是可以不灭菌的，因为伊红美蓝本身就是染料，对细菌有杀灭作用，不过你使用的量器和吸管应该用无菌的。
❷ H.E.染色中伊红染液如何配置
应该没什么特别之处吧···
参考实验书吧·
❸ 蕃红溶液有几种配置方法，分别如何配置
这个是革兰氏染色液的两种主要试剂，常规配法如下，如果用量少可以订购现成的，用量大自己配合算。
(1)结晶紫(crystal violet)液：结晶紫乙醇饱和液(结晶紫2g溶于20mL95%乙醇中)20mL，1%草酸铵水溶液80mL 将两液混匀置24h后过滤即成。
(4)番红溶液：番红O(safranine，又称沙黄O)2.5g, 95%乙醇100mL，溶解后可贮存于密闭的棕色瓶中，用时取20mL与80mL蒸馏水混匀即可。
❹ 伊红美蓝培养基的配置方法
1．培养基成分
乳糖 1g胰蛋白胨 0.5g NaCl 0.5g K2HPO4 2g2％伊红溶液 2ml0.5％美蓝溶液 1ml琼脂 1.5～2g蒸馏水 100ml自然pH或pH 7.2
2．配制方法
（1）称量 称取培养基各成分所需量。
（2）溶化 在烧杯中加入约2/3所需水量，依次逐一溶化培养基各成分。
（3）定容。
（4）调pH。
（5）按每100ml培养基加入2ml 2％伊红溶液和1ml 0.5％美蓝溶液。
（6）加琼脂 加热融化并补足失水。
（7）分装、加塞、包扎。
（8）高压蒸汽灭菌100Pa灭菌20min。
❺ 红双喜配置依您之见
我认为很好，楼主所说的配置可以说是完美的发挥了红双喜的特点，但希望楼主更好的提升技术，将此拍发挥到极致。
再给楼主一点资料：
中国国家队出征不莱梅成员红双喜器材配置一览表
运动员 正手配置（厚度mm/硬度） 反手配置
王励勤 狂飚2 （2.15/42） /
王 皓 天极3（2.15/41） /
马 林 天极2（2.15/42） /
陈 玘 狂飚3（2.15/41） /
马 龙 狂飚3（2.15/42） /
王 楠 狂飚2（2.20/40） 狂飚3（2.15/38）
张怡宁
郭 跃 狂飚3（2.20/40） /
郭 焱 狂飚3（2.20/40） /
李晓霞 狂飚3（2.15/40） /
❻ 2%伊红水溶液怎么配
如果配制100毫升伊红溶液，只要将2克伊红溶解在100毫升95%的酒精中即可。
❼ excel怎么将符合条件的单元格变成红色
可以使用excel中的条件格式功能将符合条件的单元格变成红色。
1、打开excel文档，将需要进行筛选的单元格用鼠标选中：
❽ 结晶紫染液、番红染液如何配制
1、结晶紫染液：结晶紫乙醇饱和液(结晶紫2g溶于20mL95%乙醇中)20mL，1%草酸铵水溶液80mL 将两液混匀置24h后过滤即成。
2、番红溶液：番红O(safranine，又称沙黄O)2.5g, 95%乙醇100mL，溶解后可贮存于密闭的棕色瓶中，用时取20mL与80mL蒸馏水混匀即可。
结晶紫染液、番红染液都是革兰氏染色液的两种主要试剂，革兰氏染色剂不仅用来观察细菌的形态，而且它还是细菌鉴定的重要方法，它可将全部细菌区分别革兰氏阳性菌和阴性菌两大类。
(8)如何配置依红扩展阅读:
一、革兰氏染色法的步骤为：
涂片→固定→结晶紫色染色→水洗→碘液媒染→水洗→酒精脱色→番红复染→水洗→干燥→观察。
二、结晶紫染色法测定细胞数
1、在96孔细胞培养板各孔中加0.1ml含5×104～10×4 WEHI-164细胞的培养液（含10%小牛血清的RPMI-1640培养液），37℃ 5% CO2的二氧化碳培养箱中培养2～3小时，让细胞帖壁。
2、用RPMI-1640培养液10倍递次稀释TNF标准品，根据需要3～5倍递次稀释待检样品，每孔加0.1ml稀释的标准品或待检样品，每个稀释度3个重复孔。
对照孔6个，3个阳性对照孔各加0.1ml含4μg TNF的RPMI-1640培养液，3个阴性对照孔各加100μl RPMI-1640培养液。继续培养18～24小时。
3、甩去培养液，用PBS小心洗涤一次，每孔加0.1ml 10%甲醇溶液固定细胞30秒钟。
4、吸去甲醇溶液，每孔加0.1ml结晶紫染液，室温中放置20分钟。
5、轻轻甩去染色液，用蒸馏水洗涤各孔，将培养板倒置于吸水纸上吸干水分。自然干燥或37℃烘干。此板可以在室温中长期保存。
6、测定前，每孔加0.1ml 33%醋酸脱色，充分振荡后在570nm处测定光吸收度。用光吸收度（OD）值对样品稀释度作图，比较标准品曲线和待检样品曲线即可得到待测样品中的细胞因子活性
❾ 苏木精-伊红染色的具体过程
石蜡切片苏木精-伊红（HE）染色法
（1）切片在二甲苯中脱蜡5～10分钟。（2）移入二甲苯和纯酒精（1∶1）混合液中5分钟左右（如经二次二甲苯脱蜡，此步可略）。（3）入100％、95％、 85％、70％酒精，各级为2～5分钟。最后经蒸馏水转入染液。（4）苏木精染液染色5～15分钟。（5）水洗玻片上多余染液，0.5～1％盐酸酒精（70％酒精配制）分色片刻。镜检控制，直至细胞核及核内染色质清晰为止，约数10秒钟。（6）流水冲洗15～30分钟，或者在碳酸锂饱和液中短时间碱化或蓝化，即细胞核呈蓝色。（7）蒸馏水短洗。（8）0.1～0.5％伊红染液染色1～5分钟，若着色困难，可在每100毫升染液中加入1～2滴冰醋酸，使易着色且不易脱色。（9）依次经70％、85％、95％、100％酒精脱水，各级为2～3分钟，在95％以下浓度的酒精中伊红易脱色，应适当缩短时间。（10）二甲苯透明（二次），共约10分钟。（11）封片：擦去切片周围多余二甲苯，切勿干涸，迅速滴加适量中性树胶，再加盖玻片封固。